活体细胞线粒体损伤/氧化荧光测定试剂盒产品说明书

YIJI 活体细胞线粒体损伤/氧化荧光测定试剂盒产品说明书（中文版）

主要用途

YIJI 活体细胞线粒体损伤/氧化荧光测定试剂是一种旨在通过特异性染色剂分析线粒体膜心磷脂的变

化来定性或定量测定线粒体内含质量以及自由基、氧化物等对细胞线粒体的毒性与损伤作用的而经典

的技术方法。该技术由大师级科学家精心研制、成功实验证明的。可以被用于细胞凋亡、信号传递、衰老、

代谢和营养学等的研究。产品严格无菌，即到即用，操作简易，活体检测，性能稳定。

技术背景

心磷脂（Cardiolipin）是线粒体膜上的主要成分之一。它对细胞氧化特别敏感。线粒体脂类分解，致使心磷

脂显著减少，zui终造成线粒体的严重损害。Nonyl-Acrydine Orange（NAO）是一种可自由通过细胞膜的染

色剂，特异性地染色线粒体上的心磷脂，并发出荧光。一旦线粒体膜质量减少或受到损害以及被氧化，其

荧光显著减弱。

产品内容

YIJI 清理液（Reagent A）        毫升

YIJI 染色液（Reagent B）       微升

YIJI 稀释液（Reagent C）        毫升

YIJI 保存液（Reagent D）        毫升

产品说明书                     1份

保存方式

保存 YIJI 染色液（Reagent B）在－20℃冰箱里，避免光照，其余的保存在 4℃冰箱里，有效保证6月

用户自备

胰蛋白酶乙二胺四乙酸混合液（YJ12024）：用于细胞脱离*细胞培养液（YJ12052）：用于细胞操作所需的培养基

15 毫升锥形离心管：用于细胞操作的容器

1.5 毫升离心管：用于细胞染色的容器

血细胞计数仪：用于细胞计数

台式离心机：用于沉淀细胞

细胞流式仪：用于细胞荧光分析

比色皿：用于细胞荧光分析的容器

荧光显微镜：用于观察荧光细胞

荧光分光光度仪或荧光酶标仪：用于细胞荧光定量分析

1

实验步骤

一、 脱离或悬浮细胞分析

实验开始前，将－20℃冰箱里的试剂盒中的 YIJI 染色液（Reagent B）置入冰槽里融化，YIJI

稀释液（Reagent C）放进 37℃恒温水槽里预热。然后移出 xx 微升 YIJI 染色液（Reagent B）到新

的 1.5 毫升离心管，加入 xx 微升 YIJI 稀释液（Reagent C），混匀后，将 YIJI 染色工作液置入

暗室里。同时开启荧光显微镜或荧光光度仪。然后进行下列操作。

1． 准备 1 瓶 25cm2细胞培养瓶的待测细胞（约 1 X 106细胞）

2． 小心抽去细胞培养液

3． 加入 xx 毫升 YIJI 清理液（Reagent A）到细胞培养瓶，覆盖培养瓶表面

4． 小心抽去 YIJI 清理液（Reagent A）

5． 加入 xx 毫升用户自备的胰蛋白酶乙二胺四乙酸混合液，铺满整个培养瓶表面

6． 置入 37℃培养箱 1 分种

7． 震动培养瓶，使细胞脱落

8． 加入 4 毫升用户自备的*细胞培养液

9． 移入到 15 毫升锥形离心管，充分混匀（注意：悬浮细胞可以从这一步骤开始）

10．移取 10 微升在血细胞计数仪上进行细胞计数

11．移出 1 X 106细胞到新的 15 毫升锥形离心管

12．放进台式离心机离心 5 分钟，速度为 300g

13．小心抽去上清液

14．加入 xx 毫升含有 YIJI 染色液（Reagent B）和 YIJI 稀释液（Reagent C）的 YIJI 染

色工作液，轻柔混匀

15．放进 37℃恒温水槽孵育 20 分钟，避免光照

16．放进台式离心机离心 5 分钟，速度为 300g

17．小心抽去上清液

18．加入预冷的 xx 微升 YIJI 保存液（Reagent D），轻柔混匀细胞颗粒群

19．放进冰槽里

20．即刻进行细胞流式仪分析（选择下列其中一种）：

（A）波长 580nm（红光），观察 50000 个细胞以上

波峰左移，表明线粒体受到损害或被氧化，活性氧族含量高，脂类物质降解，线粒体质重降低（线粒

体损伤或氧化）

（B）波长 488nm（绿光），观察 50000 个细胞以上

波峰左移或降低，表明线粒体受到损害或被氧化，活性氧族含量高，脂类物质降解，线粒体质重降低

（线粒体损伤或氧化）

21．或使用荧光显微镜观察（定性检测）：

1） 移出 50 微升在载玻片上

2） 即刻进行载玻片压片（选择下列其中一种）

（A）激发波长 580nm，散发波长 630nm

红光减弱，表明活性氧族含量高，脂类物质降解，线粒体质重降低（线粒体损伤或氧化）

（B）激发波长 495nm，散发波长 519nm

绿光减弱或降低，表明活性氧族含量高，脂类物质降解，线粒体质重降低（线粒体损伤或氧化）

22．或使用荧光分光光度仪

2

1） 移取 xx 微升染色后的细胞样品到用户自备的 1 毫升比色皿

2） 加入 xx 微升 YIJI 保存液（Reagent D）

3） 上下倾倒混匀

4） 即刻放进荧光分光光度仪测读：滤波器激发波长 580nm，散发波长 630nm或滤波器激发波长 495nm，

散发波长 519nm：活性氧族含量高，脂类物质降解，线粒体质重降低（线粒体损伤或氧化）――相对

荧光单位（RFU）降低

二、贴壁细胞分析（荧光酶标仪法定量分析）

实验开始前，将－20℃冰箱里的试剂盒中的 YIJI 染色液（Reagent B）在室温下融化，YIJI 稀

释液（Reagent C）放进 37℃恒温水槽里预热。然后移出 xx 毫升 YIJI 稀释液（Reagent C）到新的

15 毫升锥形离心管，加入 xx 微升 YIJI 染色液（Reagent B），混匀后，在室温下静置，并标记为

YIJI 染色工作液，放在暗室里。同时开启荧光显微镜或荧光酶标仪。然后进行下列操作。

1． 从细胞培养箱里取出待测的 96 孔细胞培养板

2． 小心抽去每孔中的培养液

3． 小心加入 xx 微升 YIJI 清理液（Reagent A）到 96 孔板中每一个孔里

4． 小心抽去每孔中的 YIJI 清理液（Reagent A）（注意：确保培养孔中无任何液体残留）

5． 小心加入 xx 微升含有 YIJI 染色液（Reagent B） YIJI稀释液和（Reagent C） YIJI的

染色工作液到 96 孔板中每一个孔里

6． 放进 37℃培养箱里，孵育 20 分钟

7． 小心抽去每孔中的 YIJI 染色工作液（注意：确保培养孔中无任何液体残留）

8． 小心加入 xx 微升 YIJI 清理液（Reagent A）到 96 孔板中每一个孔里

9． 放进荧光酶标仪测读：滤波器激发波长 580nm，散发波长 630nm，闪烁次数 10，间隔时间 0.5 秒

或滤波器激发波长 495nm，散发波长 519nm，闪烁次数 10，间隔时间 0.5 秒：活性氧族含量高，脂类

物质降解，线粒体质重降低（线粒体损伤或氧化）――相对荧光单位（RFU）降低

三、切片染色分析

实验开始前，将－20℃冰箱里的试剂盒中的 YIJI 染色液（Reagent B）置入冰槽里融化，YIJI

稀释液（Reagent C）放进 37℃恒温水槽里预热。然后移出 xx 微升 YIJI 染色液（Reagent B）到新

的 1.5 毫升离心管，加入 xx 微升 YIJI 稀释液（Reagent C），混匀后，将 YIJI 染色工作液置入

暗室里。同时开启荧光显微镜。然后进行下列操作。

1． 准备 1 个待测的切片样品

2． 小心加上 xx 微升 YIJI 清理液（Reagent A），覆盖切片表面

3． 小心移去切片上的 YIJI 清理液（Reagent A）

4． 小心加上 xx 微升含有 YIJI 染色液（Reagent B） YIJI 稀释液和（Reagent C） YIJI的

染色工作液，覆盖切片表面

5． 放进 37℃细胞培养箱里孵育 20 分钟

6． 小心移去切片上的染色液

7． 小心加上 xx 微升新鲜的 YIJI 清理液（Reagent A）

8． 小心移去 YIJI 清理液（Reagent A）

9． 盖上盖玻片

3

10．即刻在荧光显微镜下进行观察：（选择下列其中一种）

（A）激发波长 580nm，散发波长 630nm

红光减弱，表明活性氧族含量高，脂类物质降解，线粒体质重降低（线粒体损伤或氧化）

（B）激发波长 495nm，散发波长 519nm

绿光减弱或降低，表明活性氧族含量高，脂类物质降解，线粒体质重降低（线粒体损伤或氧化）

注意事项

1． 本产品为 400 次（4 个 96 孔板）、200 次（200 个切片）或 20 次操作（1 毫升处理液）

2． 所有操作均须无菌状态下进行

3． 操作时，须戴手套

4． 染色剂可以自由进入细胞

5． 孵育时，必须避免光照

6． 建议细胞染色完成后，即刻进行细胞流式仪分析

7． 红光检测具有特异性，而绿光检测线粒体质量变化

8． 细胞流式仪分析细胞检测量不得少于 10000 个

9． 如果出现红光或绿光增强或右移，可能出现染料与胞浆内脂类物质非特异性结合，因此根据不同细胞

类型，调整 YIJI 染色工作液的使用剂量（1：100 至 1：1000 容量比），避免过度染色，干扰检

测

10．本公司提供系列线粒体分析试剂产品

质量标准

1． 本产品经鉴定性能稳定

2． 本产品经鉴定荧光清晰